-
Si tiene éxito, la técnica produce una planta adulta que contiene el transgén en cada célula.47 En los animales es necesario asegurarse de que el ADN insertado está presente
en las células madre embrionarias.27 La descendencia puede ser examinada para detectar el gen. Todos los descendientes de la primera generación son heterocigotos para el gen insertado y deben cruzarse para producir un espécimen homocigoto. -
Otras técnicas son la electroporación y la biolística.39 En algunos casos, las células transfectadas pueden integrar de forma estable el ADN externo en su propio genoma; este
proceso se conoce como transfección estable.40 Para crear animales transgénicos, el ADN debe insertarse en embriones u óvulos viables. -
Entre los cuatro tipos, TALEN y CRISPR/Cas son los dos más utilizados.62 Los últimos avances se han centrado en la combinación de varios sistemas para explotar las mejores
características de ambos (por ejemplo, megaTAL, que es una fusión de un dominio de unión al ADN TALE y una meganucleasa).63 La investigación reciente también se ha centrado en el desarrollo de estrategias para eliminar o corregir genes sin
crear roturas de doble cadena (editores de bases).62 Meganucleasas y nucleasas con dedos de zinc[editar] Las meganucleasas se utilizaron por primera vez en 1988 en células de mamíferos.64 Las meganucleasas son endodesoxirribonucleasas que
funcionan como enzimas de restricción con sitios de reconocimiento largos, lo que las hace más específicas para su sitio diana que otras enzimas de restricción. -
Un marcador seleccionable, que en la mayoría de los casos confiere resistencia a los antibióticos al organismo en el que se expresa, se utiliza para determinar qué células
se transforman con el nuevo gen. Las construcciones se realizan mediante técnicas de ADN recombinante, como digestiones de restricción, ligaciones y clonación molecular.24 Insertar ADN en el genoma del huésped Una vez construido el gen, debe
integrarse de forma estable en el genoma del organismo objetivo o existir como ADN extracromosómico. -
Si la posición del gen puede determinarse mediante marcadores moleculares, una forma de aislar el fragmento de ADN correcto es realizar un recorrido cromosómico.
-
Transfección[editar] Artículo principal: Transfección La transformación tiene un significado diferente en relación con los animales, ya que indica la progresión a un estado
canceroso, por lo que el proceso utilizado para insertar ADN extraño en células animales suele denominarse transfección.35 Hay muchas formas de introducir directamente ADN en células animales in vitro. -
Aunque para crear organismos modelo transgénicos es aceptable un cierto grado de escisión fuera del objetivo, podrían no ser óptimos para todos los tratamientos de terapia
génica en humanos.65 TALEN y CRISPR[editar] El acceso al código que rige el reconocimiento del ADN por parte de los efectores similares a activadores de la transcripción (TALE) en 2009 abrió el camino al desarrollo de una nueva clase de eficaces
herramientas de edición génica basadas en TAL. -
Aproximadamente el 1% de las bacterias son capaces por naturaleza de captar ADN extraño, pero esta capacidad puede inducirse en otras bacterias.26 El estrés de las bacterias
con un choque térmico o la electroporación puede hacer que la membrana celular sea permeable al ADN que luego puede incorporarse al genoma o existir como ADN extracromosómico. -
En el caso de los animales, el gen suele insertarse en células madre embrionarias, mientras que en las plantas puede insertarse en cualquier tejido que pueda cultivarse hasta
convertirse en una planta completamente desarrollada. -
Estos marcadores suelen estar presentes en el organismo transgénico, aunque se han desarrollado varias estrategias que pueden eliminar el marcador seleccionable de la planta
transgénica madura.48 Confirmación[editar] Descubrir que un organismo recombinante contiene los genes insertados no suele ser suficiente para garantizar que se expresarán adecuadamente en los tejidos previstos. -
De este modo, las ZFN tienen la capacidad de escindir el ADN en los sitios diana.53 Mediante la ingeniería del dominio de dedo de zinc para apuntar a un sitio específico dentro
del genoma, es posible editar la secuencia genómica en el lugar deseado. -
Los métodos basados en sustancias químicas utilizan compuestos naturales o sintéticos para formar partículas que facilitan la transferencia de genes a las células.36 Estos
vectores sintéticos tienen la capacidad de unir ADN y dar cabida a grandes transferencias genéticas.37 Uno de los métodos más sencillos consiste en utilizar fosfato de calcio para unir el ADN y luego exponerlo a células cultivadas. -
Otras modificaciones de estos sistemas permitieron a los investigadores inducir la recombinación sólo en determinadas condiciones, lo que permitió eliminar o expresar genes
en los momentos o estadios de desarrollo deseados.52 La edición del genoma utiliza nucleasas artificiales que crean roturas específicas de doble cadena en los lugares deseados del genoma. -
Es posible sintetizar genes artificialmente.22 Algunas secuencias sintéticas están disponibles en el mercado, lo que permite prescindir de muchos de estos primeros pasos.23
Modificación[editar] El gen que se va a insertar debe combinarse con otros elementos genéticos para que funcione correctamente. -
La región promotora inicia la transcripción del gen y puede utilizarse para controlar la localización y el nivel de expresión del gen, mientras que la región terminadora finaliza
la transcripción. -
La banda de ADN del tamaño correcto debe contener el gen, donde se puede eliminar del gel.18 : 40–41 Otra técnica para aislar genes de secuencias conocidas es la reacción
en cadena de la polimerasa (PCR).21 La PCR es una potente herramienta que puede amplificar una secuencia determinada, que luego puede aislarse mediante electroforesis en gel. -
Las únicas partes esenciales del ADN-T son sus dos pequeñas repeticiones de borde (25 pares de bases), al menos una de las cuales es necesaria para la transformación de la
planta.3031 Los genes que se van a introducir en la planta se clonan en un vector de transformación de plantas que contiene la región de ADN-T del plásmido. -
Una vez aislado un gen, puede almacenarse en el interior de la bacteria, lo que proporciona un suministro ilimitado para la investigación.11 Se pueden realizar cribas genéticas
para determinar genes potenciales, seguidas de otras pruebas que identifiquen a los mejores candidatos. -
Esta fase acuosa puede eliminarse y purificarse aún más si es necesario repitiendo los pasos de fenol-cloroformo.
-
Cruzando un organismo que contenga los sitios de recombinasa flanqueando el gen de interés con un organismo que exprese el RES bajo el control de promotores específicos de
tejido, es posible eliminar o activar genes sólo en determinadas células. -
Este enfoque consiste en atacar a un gen específico con una mutación y luego observar qué fenotipo se desarrolla.12 La mutación puede diseñarse para inactivar el gen o solo
permitir que se active bajo ciertas condiciones. -
Aunque las meganucleasas siguen siendo bastante susceptibles a la unión fuera del objetivo, lo que las hace menos atractivas que otras herramientas de edición de genes, su
menor tamaño las hace atractivas sobre todo para las perspectivas de vectorización viral. -
Si el gen expresa una homología cercana a un gen conocido de otra especie, entonces podría aislarse buscando genes en la biblioteca que coincidan estrechamente con el gen
conocido.19 Para secuencias de ADN conocidas, pueden utilizarse enzimas de restricción que cortan el ADN a ambos lados del gen. A continuación, la electroforesis en gel clasifica los fragmentos en función de su longitud.20 Algunos geles pueden
separar secuencias que difieren en un solo par de bases. -
Los primeros métodos de inserción de genes en determinados lugares del genoma se basaban en la recombinación homóloga (RH).51 Al crear construcciones de ADN que contienen
una plantilla que coincide con la secuencia del genoma objetivo, es posible que los procesos de RH dentro de la célula inserten la construcción en el lugar deseado. -
Una vez aislados, se añaden elementos genéticos adicionales al gen para permitir su expresión en el organismo huésped y ayudar a la selección.
-
La manipulación genética dirigida por el hombre comenzó con la domesticación de plantas y animales mediante selección artificial en torno al año 12.000 a. C.1:1 Se desarrollaron
varias técnicas para ayudar en la cría y la selección. -
Este método puede utilizarse en plantas que no son susceptibles a la infección por Agrobacterium y también permite la transformación de los plástidos de las plantas.
-
Estas pruebas también pueden confirmar la localización cromosómica y el número de copias del gen insertado.49 Una vez confirmados, también se utilizan métodos que buscan y
miden los productos génicos (ARN y proteínas) para evaluar la expresión génica, la transcripción, los patrones de procesamiento del ARN y la expresión y localización de los productos proteicos. -
En este método, las células reciben una breve descarga con un campo eléctrico de 10-20 kV/cm, que se cree que crea agujeros en la membrana celular a través de los cuales puede
entrar el ADN plasmídico. -
Debido a la presencia de secuencias repetidas, son difíciles de construir mediante procedimientos estándar de biología molecular y dependen de métodos más complicados, como
la clonación Golden Gate.62 En 2011, se desarrolló otra tecnología revolucionaria basada en los sistemas CRISPR/Cas (repetición palindrómica corta agrupada y regularmente interespaciada / proteína asociada CRISPR) que funcionan como un sistema
inmunitario adaptativo en bacterias y arqueas. -
Las células vegetales también pueden transformarse mediante electroporación, que utiliza una descarga eléctrica para hacer que la membrana celular sea permeable al ADN plasmídico.
-
La solución, junto con el ADN, es encapsulada por las células.38 Los liposomas y los polímeros pueden utilizarse como vectores para introducir el ADN en células animales cultivadas.
-
Se sugiere que la exposición de las células a cationes divalentes en condiciones de frío puede cambiar o debilitar la estructura de la superficie celular, haciéndola más permeable
al ADN. -
Muchas empresas venden ahora kits que simplifican el proceso.18 Aislamiento de genes[editar] El gen que los investigadores pretenden modificar (conocido como gen de interés)
debe separarse del ADN extraído. -
La ingeniería de las TALE mediante la fusión del núcleo de unión al ADN con el dominio catalítico de la nucleasa FokI permitió crear una nueva herramienta de nucleasas de
diseño, la nucleasa TALE (TALEN).67 Tienen una de las mayores especificidades de todas las nucleasas de ingeniería actuales. -
Más tarde se demostró que CRISPR/Cas9 puede editar células humanas en una placa.
-
Entre los avances más importantes figuran el descubrimiento de enzimas de restricción, ligasas de ADN y el desarrollo de secuenciación y reacción en cadena de la polimerasa.
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Si existe un ADN donante que contenga la secuencia adecuada (homologías), el nuevo material genético que contenga el transgén se integrará en el lugar deseado con gran eficacia
medianterecombinación homóloga.53 Hay cuatro familias de nucleasas diseñadas: meganucleasas, ZFN, nucleasas efectoras similares a activadores de transcripción (TALEN), las CRISPR/Cas (agrupadas regularmente interespaciadas cortas Repetición
palindrómica/proteína asociada a CRISPR (p. -
Mezclando con fenol y/o cloroformo, seguido de centrifugación, los ácidos nucleicos pueden separarse de estos restos en una fase acuosa superior.
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Para determinar si un gen útil está presente en un fragmento concreto, se analiza la biblioteca de ADN en busca del fenotipo deseado.
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Historia Muchos descubrimientos y avances diferentes condujeron al desarrollo de la ingeniería genética.
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La creación de bebés resistentes al VIH por parte del investigador chino He Jiankui es quizá el ejemplo más famoso de alteración genética mediante este método.68 Es mucho
menos eficaz en la corrección de genes. -
El gen puede modificarse en esta fase para mejorar su expresión o eficacia.
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En primer lugar, los ingenieros genéticos deben elegir qué gen desean insertar, modificar o eliminar.
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Regeneración[editar] Como a menudo sólo se transforma una única célula con material genético, el organismo debe regenerarse a partir de esa única célula.
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Para los organismos en los que la mutación no resulta práctica, los científicos buscan en su lugar individuos de la población que presenten la característica a través de mutaciones
que se producen de forma natural. -
La capacidad de diseñar organismos genéticamente se basa en años de investigación y descubrimientos sobre la función y manipulación de los genes.
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El tipo de virus utilizado dependerá de las células objetivo y de si el ADN debe alterarse de forma permanente o temporal.
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Tras descubrir la existencia y propiedades del ADN, hubo que desarrollar herramientas que permitieran manipularlo.
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El ADN-T del plásmido se integra de forma semialeatoria en el genoma de la célula huésped.29 Modificando el plásmido para que exprese el gen de interés, los investigadores
pueden insertar el gen elegido de forma estable en el genoma de la planta. -
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Aunque la primera generación carece de la especificidad de TALEN, la principal ventaja de esta tecnología es la simplicidad del diseño.
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Más tarde, los genes pasaron a clonarse a partir de un segmento de ADN tras la creación de una biblioteca de ADN o sintetizarse artificialmente.
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El ADN se puede visualizar tiñéndolo con bromuro de etidio y fotografiándolo bajo luz ultravioleta.
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La recombinasa Cre es una enzima que elimina ADN mediante recombinación homóloga entre secuencias de unión conocidas como sitios Lox-P. El sistema Flip-FRT funciona de forma
similar, con la recombinasa Flip reconociendo secuencias FRT. -
Estas roturas están sujetas a procesos celulares de reparación del ADN que pueden aprovecharse para eliminar, corregir o insertar genes.
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CRISPR/Cpf1 es un sistema descubierto más recientemente que requiere un ARN guía diferente para crear roturas particulares de doble cadena (deja salientes al escindir el ADN)
en comparación con CRISPR/Cas9. -
El experimento de Griffith ya había demostrado que algunas bacterias tenían la capacidad de captar y expresar ADN extraño de forma natural.
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La reparación selectiva del ADN es posible proporcionando una plantilla de ADN donante que represente el cambio deseado y que (a veces) se utilice para la reparación de la
rotura de doble cadena mediante recombinación homóloga. -
También permite atacar varios sitios simultáneamente, lo que permite editar varios genes a la vez.
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Una vez encontrados, los genes y otra información genética de una amplia gama de organismos pueden insertarse en bacterias para su almacenamiento y modificación, creando bacterias
modificadas genéticamente en el proceso. -
Existen varias técnicas para insertar el gen en el genoma del huésped y varían en función del tipo de organismo objetivo.
-
Los genes añadidos suelen ir acompañados de regiones promotoras y terminadoras, así como de un gen marcador seleccionable.
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Para objetivos más complejos pueden estar implicadas vías biosintéticas enteras en las que intervienen múltiples genes.
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Se puede colocar un marcador con fragmentos de longitudes conocidas junto al ADN para estimar el tamaño de cada banda.
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Los liposomas cargados positivamente se unen al ADN,36 mientras que pueden diseñarse polímeros que interactúen con el ADN.
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Inserción de genes dirigida Los métodos tradicionales de ingeniería genética suelen insertar el nuevo material genético de forma aleatoria en el genoma del huésped.
-
Otro método utilizado para transformar células vegetales es la biolística, en la que se recubren partículas de oro o tungsteno con ADN y se inyectan en células vegetales jóvenes
o embriones de plantas.34 Parte del material genético entra en las células y las transforma. -
Cultivando las células en presencia de un antibiótico o producto químico que seleccione o marque las células que expresan ese gen, es posible separar las células modificadas
de las no modificadas.
Works Cited
[‘1. Root, Clive (2007). Domestication. Greenwood Publishing Groups. ISBN 9780313339875.
2. ↑ Saltar a:a b Kingsbury, Noel (15 de octubre de 2009). Hybrid: The History and Science of Plant Breeding. University of Chicago Press. ISBN 978-0-226-43705-7.
3. ↑
«What did Gregor Mendel think he discovered?». Genetics 131 (2): 245-53. Junio de 1992. PMC 1205000. PMID 1644269. doi:10.1093/genetics/131.2.245.
4. ↑ «How restriction enzymes became the workhorses of molecular biology». Proceedings of the National
Academy of Sciences of the United States of America 102 (17): 5905-8. Abril de 2005. Bibcode:2005PNAS..102.5905R. PMC 1087929. PMID 15840723. doi:10.1073/pnas.0500923102.
5. ↑ «Enzymatic breakage and joining of deoxyribonucleic acid, I. Repair of
single-strand breaks in DNA by an enzyme system from Escherichia coli infected with T4 bacteriophage». Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 57 (4): 1021-8. April 1967. Bibcode:1967PNAS…57.1021W. PMC 224649.
PMID 5340583. doi:10.1073/pnas.57.4.1021.
6. ↑ «Cell genetics and hereditary symbiosis». Physiological Reviews 32 (4): 403-30. octubre de 1952. PMID 13003535. doi:10.1152/physrev.1952.32.4.403.
7. ↑ «Calcium-dependent bacteriophage DNA infection».
Journal of Molecular Biology 53 (1): 159-62. octubre de 1970. PMID 4922220. doi:10.1016/0022-2836(70)90051-3.
8. ↑ «Transformation of various species of gram-negative bacteria belonging to 11 different genera by electroporation». Molecular & General
Genetics 216 (1): 175-7. marzo de 1989. PMID 2659971. doi:10.1007/BF00332248.
9. ↑ Nester, Eugene. «Agrobacterium: The Natural Genetic Engineer (100 Years Later)». Archivado desde el original el 19 de octubre de 2012. Consultado el 14 de enero de
2011.
10. ↑ «Ti plasmid vector for the introduction of DNA into plant cells without alteration of their normal regeneration capacity». The EMBO Journal 2 (12): 2143-50. 1983. PMC 555426. PMID 16453482. doi:10.1002/j.1460-2075.1983.tb01715.x.
11. ↑
«Rediscovering Biology – Online Textbook: Unit 13 Genetically Modified Organisms». www.learner.org. Archivado desde el original el 3 de diciembre de 2019. Consultado el 18 de agosto de 2017.
12. ↑ Saltar a:a b c Alberts, Bruce; Johnson, Alexander;
Lewis, Julian; Raff, Martin; Roberts, Keith; Walter, Peter (2002). «Studying Gene Expression and Function». Molecular Biology of the Cell. New York: Garland Science.
13. ↑ Griffiths, Anthony JF; Miller, Jeffrey H.; Suzuki, David T.; Lewontin, Richard
C.; Gelbart, William M (2000). «Mutant types». An Introduction to Genetic Analysis (7th edición).
14. ↑ Koh, Hee-Jong; Kwon, Suk-Yoon; Thomson, Michael (26 de agosto de 2015). Current Technologies in Plant Molecular Breeding: A Guide Book of Plant
Molecular Breeding for Researchers. Springer. p. 242. ISBN 9789401799966.
15. ↑ «Bacillus thuringiensis as a specific, safe, and effective tool for insect pest control». Journal of Microbiology and Biotechnology 17 (4): 547-59. abril de 2007. PMID
18051264.
16. ↑ Adler J (May 2011). «The growing menace from superweeds». Scientific American 304 (5): 74-9. Bibcode:2011SciAm.304e..74A. PMID 21595408. doi:10.1038/scientificamerican0511-74.
17. ↑ Food and Agricultural Organisation of the United
Nations. «The process of genetic modification».
18. ↑ Saltar a:a b An Introduction to Genetic Engineering. Cambridge University Press. 29 de mayo de 2008. ISBN 978-1-139-47178-7.
19. ↑ Michels, Corinne A. (10 de junio de 2002). Genetic Techniques
for Biological Research: A Case Study Approach. John Wiley & Sons. pp. 85-88. ISBN 978-0-471-89919-8.
20. ↑ «8». Isolating, Cloning, and Sequencing DNA (4th edición). New York: Garland Science. 2002.
21. ↑ Kaufman RI, Nixon BT (Julio de 1996).
«Use of PCR to isolate genes encoding sigma54-dependent activators from diverse bacteria». Journal of Bacteriology 178 (13): 3967-70. PMC 232662. PMID 8682806. doi:10.1128/jb.178.13.3967-3970.1996.
22. ↑ Liang J, Luo Y, Zhao H (2011). «Synthetic
biology: putting synthesis into biology». Wiley Interdisciplinary Reviews: Systems Biology and Medicine 3 (1): 7-20. PMC 3057768. PMID 21064036. doi:10.1002/wsbm.104.
23. ↑ «GeneArt Gene Synthesis». www.thermofisher.com. Consultado el 9 de noviembre
de 2017.
24. ↑ «Personal reflections on the origins and emergence of recombinant DNA technology». Genetics 184 (1): 9-17. January 2010. PMC 2815933. PMID 20061565. doi:10.1534/genetics.109.112144.
25. ↑ «Viral and nonviral delivery systems for
gene delivery». Advanced Biomedical Research 1: 27. 6 de julio de 2012. PMC 3507026. PMID 23210086. doi:10.4103/2277-9175.98152.
26. ↑ Saltar a:a b «DNA uptake during bacterial transformation». Nature Reviews. Microbiology 2 (3): 241-9. Marzo de
2004. PMID 15083159. doi:10.1038/nrmicro844.
27. ↑ Saltar a:a b National Research Council (US) Committee on Identifying and Assessing Unintended Effects of Genetically Engineered Foods on Human Health (1 de enero de 2004). Methods and Mechanisms
for Genetic Manipulation of Plants, Animals, and Microorganisms. National Academies Press (US).
28. ↑ «Agrobacterium-mediated plant transformation: the biology behind the «gene-jockeying» tool». Microbiology and Molecular Biology Reviews 67 (1):
16-37, tabla de contenidos. Marzo de 2003. PMC 150518. PMID 12626681. doi:10.1128/MMBR.67.1.16-37.2003.
29. ↑ «Identification of Arabidopsis thaliana transformants without selection reveals a high occurrence of silenced T-DNA integrations». The
Plant Journal 41 (3): 464-77. Febrero de 2005. PMID 15659104. doi:10.1111/j.1365-313x.2004.02312.x.
30. ↑ Schell J, Van Montagu M (1977). «The Ti-Plasmid of Agrobacterium Tumefaciens, A Natural Vector for the Introduction of NIF Genes in Plants?».
Genetic Engineering for Nitrogen Fixation. Basic Life Sciences 9. pp. 159-79. ISBN 978-1-4684-0882-9. PMID 336023. doi:10.1007/978-1-4684-0880-5_12.
31. ↑ Joos H, Timmerman B, Montagu MV, Schell J (1983). «Genetic analysis of transfer and stabilization
of Agrobacterium DNA in plant cells». The EMBO Journal 2 (12): 2151-60. PMC 555427. PMID 16453483. doi:10.1002/j.1460-2075.1983.tb01716.x.
32. ↑ Thomson JA. «Genetic Engineering of Plants». Biotechnology 3. Consultado el 17 de julio de 2016.
33. ↑
«Efficient agroinfiltration of plants for high-level transient expression of recombinant proteins». Journal of Visualized Experiments 77 (77). July 2013. PMC 3846102. PMID 23913006. doi:10.3791/50521.
34. ↑ Head, Graham; Hull, Roger H; Tzotzos,
George T. (2009). Genetically Modified Plants: Assessing Safety and Managing Risk. London: Academic Pr. p. 244. ISBN 978-0-12-374106-6.
35. ↑ Alberts, Bruce; Johnson, Alexander; Lewis, Julian; Raff, Martin; Roberts, Keith; Walter, Peter (2002).
Molecular Biology of the Cell. New York: Garland Science. p. G:35. ISBN 978-0-8153-4072-0.
36. ↑ Saltar a:a b Kamimura K, Suda T, Zhang G, Liu D (Octubre de 2011). «Advances in Gene Delivery Systems». Pharmaceutical Medicine 25 (5): 293-306. PMC
3245684. PMID 22200988. doi:10.1007/bf03256872.
37. ↑ Pack DW, Hoffman AS, Pun S, Stayton PS (Julio de 2005). «Design and development of polymers for gene delivery». Nature Reviews. Drug Discovery 4 (7): 581-93. PMID 16052241. S2CID 20972049. doi:10.1038/nrd1775.
38. ↑
«Lecture 8 genetic engineering of animal cells». www.slideshare.net. 25 de enero de 2012. Consultado el 18 de julio de 2018.
39. ↑ Biocyclopedia.com. «Gene transfer (transfection) methods in animals | Genetic Engineering and Biotechnology Gene Transfer
Methods and Transgenic Organisms | Genetics, Biotechnology, Molecular Biology, Botany | Biocyclopedia.com». biocyclopedia.com. Consultado el 18 de julio de 2018.
40. ↑ Kim, Tae Kyung; Eberwine, James H. (Agosto de 2010). «Mammalian cell transfection:
the present and the future». Analytical and Bioanalytical Chemistry 397 (8): 3173-3178. ISSN 1618-2642. PMC 2911531. PMID 20549496. doi:10.1007/s00216-010-3821-6.
41. ↑ Mullin, Ann. «Pronuclear Injection». Tulane University. Archivado desde el original
el 9 de agosto de 2016. Consultado el 13 de diciembre de 2022.
42. ↑ «Embryonic Stem Cell-Mediated Gene Transfer – transgenicanimals». sites.google.com. Consultado el 19 de julio de 2018.
43. ↑ MeSH: Genetic Transduction, Genetic (en inglés)
44. ↑
«Stemcells Redirection». stemcells.nih.gov. Archivado desde el original el 20 de enero de 2017. Consultado el 13 de diciembre de 2022.
45. ↑ Tuomela M, Stanescu I, Krohn K (Octubre de 2005). «Validation overview of bio-analytical methods». Gene
Therapy. 12 Suppl 1 (S1): S131-8. PMID 16231045. doi:10.1038/sj.gt.3302627.
46. ↑ Narayanaswamy S (1994). Plant Cell and Tissue Culture. Tata McGraw-Hill Education. pp. vi. ISBN 9780074602775.
47. ↑ Walter, Peter; Roberts, Keith; Raff, Martin;
Lewis, Julian; Johnson, Alexander; Alberts, Bruce (2002). «Studying Gene Expression and Function». Molecular Biology of the Cell. 4th Edition.
48. ↑ «Elimination of selection markers from transgenic plants». Current Opinion in Biotechnology 12 (2):
139-43. Abril de 2001. PMID 11287227. doi:10.1016/S0958-1669(00)00188-9.
49. ↑ Setlow, Jane K. (31 de octubre de 2002). Genetic Engineering: Principles and Methods. Springer Science & Business Media. p. 109. ISBN 9780306472800.
50. ↑ Deepak S,
Kottapalli K, Rakwal R, Oros G, Rangappa K, Iwahashi H, Masuo Y, Agrawal G (June 2007). «Real-Time PCR: Revolutionizing Detection and Expression Analysis of Genes». Current Genomics 8 (4): 234-51. PMC 2430684. PMID 18645596. doi:10.2174/138920207781386960.
51. ↑
Lodish H, Berk A, Zipursky SL, Matsudaira P, Baltimore D, Darnell J (2000). «Chapter 8.5: Gene Replacement and Transgenic Animals: DNA Is Transferred into Eukaryotic Cells in Various Ways». Molecular Cell Biology (4th edición). W. H. Freeman and Company.
ISBN 978-0-7167-3136-8. (requiere registro).
52. ↑ Saltar a:a b Rocha-Martins, Maurício; Cavalheiro, Gabriel R.; Matos-Rodrigues, Gabriel E.; Martins, Rodrigo a. P.; Rocha-Martins, Maurício; Cavalheiro, Gabriel R.; Matos-Rodrigues, Gabriel E.; Martins,
Rodrigo a. P. (Agosto de 2015). «From Gene Targeting to Genome Editing: Transgenic animals applications and beyond». Anais da Academia Brasileira de Ciências 87 (2): 1323-1348. ISSN 0001-3765. PMID 26397828. doi:10.1590/0001-3765201520140710.
53. ↑
Saltar a:a b c d «Genome engineering with zinc-finger nucleases». Genetics 188 (4): 773-82. Agosto de 2011. PMC 3176093. PMID 21828278. doi:10.1534/genetics.111.131433.
54. ↑ «Efficient targeting of a SCID gene by an engineered single-chain homing
endonuclease». Nucleic Acids Research 37 (16): 5405-19. Septiembre de 2009. PMC 2760784. PMID 19584299. doi:10.1093/nar/gkp548.
55. ↑ «Heritable targeted mutagenesis in maize using a designed endonuclease». The Plant Journal 61 (1): 176-87. Enero
de 2010. PMID 19811621. doi:10.1111/j.1365-313X.2009.04041.x.
56. ↑ «High-frequency modification of plant genes using engineered zinc-finger nucleases». Nature 459 (7245): 442-5. May 2009. Bibcode:2009Natur.459..442T. PMC 2743854. PMID 19404258.
doi:10.1038/nature07845.
57. ↑ «Precise genome modification in the crop species Zea mays using zinc-finger nucleases». Nature 459 (7245): 437-41. May 2009. Bibcode:2009Natur.459..437S. PMID 19404259. doi:10.1038/nature07992.
58. ↑ «Targeting DNA
double-strand breaks with TAL effector nucleases». Genetics 186 (2): 757-61. Octubre de 2010. PMC 2942870. PMID 20660643. doi:10.1534/genetics.110.120717.
59. ↑ «TAL nucleases (TALNs): hybrid proteins composed of TAL effectors and FokI DNA-cleavage
domain». Nucleic Acids Research 39 (1): 359-72. Enero de 2011. PMC 3017587. PMID 20699274. doi:10.1093/nar/gkq704.
60. ↑ «Genome-scale engineering for systems and synthetic biology». Molecular Systems Biology 9: 641. 2013. PMC 3564264. PMID 23340847.
doi:10.1038/msb.2012.66.
61. ↑ «Precision editing of large animal genomes». Advances in Genetics Volume 80. Advances in Genetics 80. 2012. pp. 37-97. ISBN 9780124047426. PMID 23084873. doi:10.1016/B978-0-12-404742-6.00002-8.
62. ↑ Saltar a:a b
c d Malzahn, Aimee; Lowder, Levi; Qi, Yiping (2017). «Plant genome editing with TALEN and CRISPR». Cell & Bioscience 7: 21. PMC 5404292. PMID 28451378. doi:10.1186/s13578-017-0148-4.
63. ↑ Boissel S, Jarjour J, Astrakhan A, Adey A, Gouble A, Duchateau
P, Shendure J, Stoddard BL, Certo MT, Baker D, Scharenberg AM (February 2014). «megaTALs: a rare-cleaving nuclease architecture for therapeutic genome engineering». Nucleic Acids Research 42 (4): 2591-601. PMC 3936731. PMID 24285304. doi:10.1093/nar/gkt1224.
64. ↑
Choulika, A.; Perrin, A.; Dujon, B.; Nicolas, J. F. (1994). «The yeast I-Sce I meganuclease induces site-directed chromosomal recombination in mammalian cells». Comptes Rendus de l’Académie des Sciences, Série III 317 (11): 1013-9. PMID 7882137.
65. ↑
Saltar a:a b c «Meganucleases and other tools for targeted genome engineering: perspectives and challenges for gene therapy». Current Gene Therapy 11 (1): 11-27. February 2011. PMC 3267165. PMID 21182466. doi:10.2174/156652311794520111.
66. ↑ Silva
GH, Belfort M, Wende W, Pingoud A (Agosto de 2006). «From monomeric to homodimeric endonucleases and back: engineering novel specificity of LAGLIDADG enzymes». Journal of Molecular Biology 361 (4): 744-54. PMID 16872628. doi:10.1016/j.jmb.2006.06.063.
67. ↑
Christian, M.; Cermak, T.; Doyle, E. L.; Schmidt, C.; Zhang, F.; Hummel, A.; Bogdanove, A. J.; Voytas, D. F. (2010). «Targeting DNA Double-Strand Breaks with TAL Effector Nucleases». Genetics 186 (2): 757-761. PMC 2942870. PMID 20660643. doi:10.1534/genetics.110.120717.
68. ↑
Cyranoski, D. (2019). «What’s next for CRISPR babies?». Nature 566 (7745): 440-442. PMID 30809070. doi:10.1038/d41586-019-00673-1.
69. ↑ Rees, H.; Liu, D. R. (2018). «Base editing: precision chemistry on the genome and transcriptome of living cells.».
Nature Reviews Genetics 19 (12): 770-788. PMC 6535181. PMID 30323312. doi:10.1038/s41576-018-0059-1.
70. ↑ Anzalone, A. V.; Randolph, P.B.; Davis, J. R. (2019). «Search-and-replace genome editing without double strand breaks or donor DNA.». Nature
576 (7785): 149-157. Bibcode:2019Natur.576..149A. PMC 6907074. PMID 31634902. doi:10.1038/s41586-019-1711-4.
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